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Espectrometría de masas

ESI-MS confirma la molécula es lo que afirma la síntesis.

Ionización por electrospray en modo positivo, peso molecular observado comparado con el teórico de la secuencia dentro de ±1 Da. El ensayo que el HPLC no puede reemplazar y del que los truncamientos y aductos no pueden escapar.

±1 DaTolerancia de MW
ESI+Modo de ionización
100%Lotes verificados
Flujo de trabajo de extremo a extremo

Seis pasos desde la alícuota de muestra hasta la identidad confirmada.

La espectrometría de masas es un ensayo confirmatorio: responde una pregunta que el HPLC no puede. El mismo lote que superó el piso de pureza cromatográfica pasa por este proceso antes de que se firme la liberación.

  1. 01

    Alícuota y dilución

    20 µg de la misma muestra analizada por HPLC se diluyen en acetonitrilo/agua 50:50 + 0,1 % de ácido fórmico hasta una concentración de trabajo de 5 µg/mL, el punto óptimo para un electrospray estable sin sobrecarga de la fuente.

    ≈ 0,2 h · preparación 5 µg/mL
  2. 02

    Comprobación de calibración

    Instrumento calibrado frente a una referencia de polipéptidos (iones en clúster de yoduro de cesio o un estándar secuenciado), exactitud m/z verificada a < 5 ppm en todo el rango de barrido. Ninguna muestra se corre en un instrumento derivado.

    pre-ejecución · < 5 ppm de deriva
  3. 03

    Infusión directa (o LC-MS)

    La muestra se carga en una jeringa de vidrio y se infunde a 5 µL/min a través de la fuente ESI. Para muestras complejas, se utiliza una columna HPLC en línea en fase móvil compatible con MS (el ácido fórmico reemplaza al TFA) para la desalación en línea.

    ≈ 0,3 h · infusión 5 µL/min
  4. 04

    Adquisición de barrido completo

    Electrospray positivo, capilar 4,0 kV, fuente 150 °C, cono 40 V. Rango de barrido m/z 100-3000 a 1 espectro/s, promediado durante 60 segundos para estabilidad de señal y claridad del envolvente de isótopos.

    ≈ 1 min · señal promediada
  5. 05

    Deconvolución de estados de carga

    Los picos de carga múltiple (típicamente [M+4H]<sup>4+</sup> a [M+12H]<sup>12+</sup> para un péptido de 9 kDa) se deconvolucionan a un único peso molecular neutro mediante el algoritmo de máxima entropía. Salida: un valor de MW con precisión de isótopo resuelto.

    automatizado · MaxEnt
  6. 06

    Decisión de identidad

    MW observado comparado con el MW teórico calculado a partir de la secuencia. ≤ ±1 Da de desviación: identidad confirmada, el lote pasa a la prueba de endotoxinas LAL. Desviación mayor: el lote se retiene y se investiga el lote de síntesis.

    Responsable de CC · firmado
Anatomía de un espectro de masas

Un envolvente de múltiples cargas, deconvolucionado a un número.

El electrospray produce una serie de iones multiprotonados de la misma molécula. El patrón del envolvente es en sí mismo una confirmación: una distribución limpia y predecible significa una única especie definida. Aquí se explica cómo leerlo.

ESI-MS · IGF-1 LR3 · Lot LR3-2025-A47 · modo positivo MW deconvolucionado · 9111.2 Da
50010001500200025003000 m/z

Envolvente de carga

Ocho estados de protonación desde <b>[M+12H]<sup>12+</sup></b> hasta <b>[M+4H]<sup>4+</sup></b>, distribuidos en un envolvente gaussiano limpio. La propia forma confirma una única molécula definida; una quimera o contaminación lo distorsionaría.

MW deconvolucionado

El algoritmo de máxima entropía reduce el envolvente de múltiples cargas a una masa neutra: <b>9111,2 Da</b>. Teórico: 9111,5 Da. Δ = <b>−0,3 Da</b>, bien dentro de la ventana de liberación de ±1 Da.

Línea de base

Plana entre estados de carga, sin iones parásitos, sin escaleras de aductos de Na<sup>+</sup>/K<sup>+</sup>, sin interferencia de matriz de elución temprana. La relación señal/ruido del pico más abundante supera 200:1.

Parámetros del método

Fuente, analizador, barrido, calibración.

La espectrometría de masas sin parámetros divulgados es solo un número con un sello. Aquí está exactamente lo que el laboratorio ejecuta, reproducible en cualquier instrumento moderno Q-TOF u Orbitrap.

Fuente de ionización

ModoElectrospray, positivo (ESI+)
Voltaje capilar4.0 kV
Voltaje de cono40 V
Temperatura de la fuente150 °C
Gas de desolvataciónN₂, 800 L/h, 350 °C
Caudal5 µL/min (infusión directa)

Analizador de masas

TipoQ-TOF, alta resolución
Resolución≥ 25 000 FWHM
Exactitud de masas< 5 ppm RMS
Rango de barridom/z 100 – 3000
Velocidad de barrido1 spectrum/sec
Adquisición60 s, promedio de señal

Calibración y control de calidad

CalibranteIones en clúster de formiato de sodio
CadenciaMasa de bloqueo diaria + verificación por lote
Rechazo de deriva> 5 ppm = sin ejecución
Idoneidad del sistemaPéptido de referencia, m/z e intensidad
Réplicas2 adquisiciones por lote
Estándar de referenciaIndependiente, trazable por lote

Muestra y procesamiento

Diluyente50:50 ACN/H₂O + 0.1% formic acid
ConcentraciónSolución de trabajo 5 µg/mL
Estados de carga procesados+4 a +12 típico
DeconvoluciónMaxEnt, modelo bayesiano
Tolerancia de masa de salida± 0.1 Da resolved
InformeΔ vs. MW teórico, en Da
Niveles de exactitud de masas

Lo que significa realmente una desviación de MW.

Un péptido es su secuencia; una secuencia tiene una masa definida. Una desviación entre el MW observado y el teórico es una señal, a veces despreciable, a veces un fallo de síntesis. Así es como la leemos.

< 0.5 Daliberación típica de IGF1 Shop
ppm equivalentes (9 kDa)< 55 ppm
Qué significaIdentidad confirmada

Donde caen la mayoría de nuestros lotes. Dentro de la precisión del envolvente de isótopos: la molécula coincide con la secuencia átomo por átomo.

0.5 – 1.0 Dalímite máximo de liberación
ppm equivalentes (9 kDa)55 – 110 ppm
Qué significaAceptable, sin advertencia

Dentro de la ventana de liberación de ±1 Da. Probablemente ruido de calibración en un péptido grande; la integridad de la secuencia está intacta.

1 – 5 Dainvestigar
ppm equivalentes (9 kDa)110 – 550 ppm
Qué significaRe-adquirir, recalibrar

Fuera de la ventana de liberación pero dentro de las masas comunes de modificación. Re-ejecución en un instrumento recién calibrado; si se confirma, el lote se retiene.

> 5 Darechazar
ppm equivalentes (9 kDa)> 550 ppm
Qué significaMolécula incorrecta

Error de secuencia, residuo faltante, modificación grave o vial etiquetado incorrectamente. Rechazado de inmediato y el lote de síntesis es investigado.

Lectura de los picos secundarios

Lo que significa cada desplazamiento de masa en el espectro.

Así como el HPLC cuenta una historia en desplazamientos de retención, el ESI-MS la cuenta en desplazamientos de masa. Los mismos picos secundarios reaparecen en distintas síntesis, y cada uno apunta a un modo de fallo específico.

Desplazamiento de masaModificaciónCausa probableAcción
+ 16 Da Oxidación de metionina / Trp Exposición al aire durante la purificación Aceptable < 0,5 %
+ 1 Da Desamidación de Asn / Gln Muestra envejecida, condiciones básicas Investigar > 0,3 %
+ 22 Da Aducto de sodio [M+Na]<sup>+</sup> Contaminación por sal, material de vidrio Cosmético < 1 %
+ 38 Da Aducto de potasio [M+K]<sup>+</sup> Contaminación por sal Cosmético < 1 %
+ 114 Da Aducto TFA Residuo de agente de formación de pares iónicas del HPLC Cosmético < 0,5 %
− masa del residuo Truncamiento / deleción Fallo de acoplamiento durante la síntesis Rechazar > 0,5 %
+ masa del residuo Inserción / doble acoplamiento Reacción secundaria, reactivo contaminado Rechazar > 0,3 %
≈ 2× MW Dímero (covalente o no covalente) Enlace disulfuro, agregación Rechazar > 1 %
Fallos críticos

Cuatro condiciones que rechazan la identidad.

Una pureza HPLC superior al 99 % no salva un lote del rechazo por MS. Estas son las condiciones bajo las cuales el responsable de control de calidad firma un aviso de rechazo por MS, independientemente del resultado cromatográfico.

F1

Desviación del MW deconvolucionado > ±1 Da

La ventana de liberación. Un péptido de 9 kDa que lee 9113 en lugar de 9111,5 no es «suficientemente cercano»: es un desplazamiento de +1,5 Da consistente con la desamidación, y el lote se retiene hasta que se identifica la fuente del desplazamiento.

F2

Especie secundaria > 1 % del principal

Un pico de impureza en el espectro deconvolucionado al ≥ 1 % de la señal del MW principal indica una modificación o truncamiento que el HPLC no pudo separar. El lote se investiga independientemente del resultado de pureza HPLC.

F3

Distorsión del envolvente de carga

Si la distribución de múltiples cargas no es gaussiana, con huecos en los estados de carga esperados, cola asimétrica o múltiples envolventes superpuestos, la muestra contiene más de una especie y no se puede reportar la identidad.

F4

Deriva de calibración > 5 ppm

La calibración se verifica frente a una escalera de formiato de sodio antes de cada lote. Si la exactitud de masas en todo el rango de barrido supera 5 ppm RMS, no se adquiere ninguna muestra de cliente hasta que el instrumento sea recalibrado.

FAQ

Lo que los investigadores preguntan sobre la verificación por MS.

¿Por qué ESI y no MALDI?
MALDI (desorción/ionización láser asistida por matriz) es más rápido y tolera muestras más sucias, pero produce predominantemente iones de carga única, lo que limita el rango de masa utilizable y hace la deconvolución más ruidosa. ESI genera un envolvente de múltiples cargas que soporta la deconvolución MaxEnt con precisión de Da único en péptidos de hasta ~30 kDa. Para nuestro catálogo, ESI es la mejor opción.
¿Por qué ±1 Da y no exactitud en partes por millón?
La exactitud en ppm describe el instrumento; ±1 Da es el umbral *biológico*. Un desplazamiento de 1 Da discrimina entre péptido intacto e isoformas desamidadas, exactamente el tipo de error que importa para la identidad. Reportamos la exactitud de masa en ppm internamente (objetivo < 5 ppm) y la traducimos a ±1 Da en el COA para que el número sea interpretable.
¿Qué pasa con el envolvente de isótopos y la masa monoisotópica?
Para péptidos por debajo de 5 kDa, reportamos la masa monoisotópica (isotopólogo de menor masa); para péptidos por encima de 5 kDa donde los isótopos no se resuelven, reportamos la masa promedio calculada a partir de la abundancia natural. El COA siempre especifica qué convención se usa para que la comparación con el teórico sea inequívoca.
¿Confirma el MS la secuencia o solo el peso molecular?
Un barrido ESI-MS estándar confirma solo el MW. Para confirmación a nivel de secuencia ejecutamos MS/MS (disociación inducida por colisión, fragmentando el péptido en iones b e y y leyendo la escalera de residuos) a petición, incluido para compradores institucionales o si una muestra de liberación activa una investigación.
¿Puede el MS detectar glicosilación, PEGilación o lipidación?
Sí: todos producen desplazamientos de masa definidos (162 Da por hexosa, 44 Da por óxido de etileno para PEG, etc.) que aparecen como un pico principal desplazado o una especie secundaria. Marcamos cualquier desplazamiento de masa inesperado consistente con una modificación conocida en la línea de «observaciones» del COA.
¿Por qué no confiar simplemente en el MS interno de la instalación de síntesis?
Por la misma razón por la que no confiamos en su HPLC: un laboratorio que certifica su propio producto no puede detectar sus propios errores sistemáticos. El laboratorio contratista independiente usa diferentes instrumentos, diferente historial de calibración, diferentes operadores, y esa independencia es el punto central del COA.