Inicio Catálogo Calidad y COA Acerca de Contacto Carrito
Ver catálogo
Envío gratuito en pedidos superiores a 9 · $7.99 EE. UU. (48 h) · $14.99 a todo el mundo (5 días) · Embalaje discreto · Criptomoneda aceptada
Flujo de trabajo HPLC

HPLC en fase inversa, a 220 nm, frente a un estándar de referencia.

Cada lote liberado se perfila en una columna C18 con elución en gradiente, detección UV a 220 nm y cuantificado como pureza en porcentaje de área. El cromatograma acompaña cada envío.

≥ 99%Piso de pureza de liberación
220 nmLongitud de onda de detección
C18Columna de fase inversa
Flujo de trabajo de extremo a extremo

Seis pasos desde el lote de síntesis hasta el lote liberado.

Cada péptido pasa por el mismo camino. No hay un carril acelerado, no hay un atajo interno, no hay «esto parecía bien, envíalo». Un fallo en cualquier paso rechaza el lote.

  1. 01

    Recepción de muestra y cadena de custodia

    El péptido liofilizado llega sellado desde la instalación de síntesis. Se registran el ID del lote, el lote, la secuencia teórica y el MW. El vial se divide en dos alícuotas: una para análisis y otra para archivo (conservada 24 meses).

    ≈ 0,5 h · registro de recepción
  2. 02

    Reconstitución y dilución

    2 mg de péptido reconstituidos en 1 mL de fase móvil A (0,1 % de TFA en agua) con agitación suave. Diluido a concentración de trabajo de 1 mg/mL. Centrifugado 5 min a 13 000 g para eliminar partículas que pudieran obstruir la columna.

    ≈ 0,3 h · preparación 1 mg/mL
  3. 03

    Equilibración de columna

    Columna C18 de 250 × 4,6 mm (5 µm, 100 Å) equilibrada al 95 % A / 5 % B, 1,0 mL/min, 30 °C hasta que la deriva de la línea base sea < 0,0005 AU/min. Presión estable dentro de ± 5 bar en tres inyecciones en blanco.

    ≈ 0,5 h · hasta línea de base
  4. 04

    Inyección y ejecución del gradiente

    Bucle de inyección de 20 µL, llenado completo del bucle. Gradiente lineal del 5 % al 95 % de acetonitrilo (0,1 % TFA) en 25 min, mantenimiento 5 min al 95 %, retorno a condiciones iniciales en 2 min, re-equilibrado 8 min. Ciclo total: 40 min.

    ≈ 0,7 h · ciclo de 40 min
  5. 05

    Detección e integración

    Detector UV de matriz de diodos, traza principal a 220 nm (enlace peptídico), secundaria a 280 nm (Trp/Tyr). Los picos se integran valle a valle, con corrección de línea de base, y el porcentaje de área se reporta relativo al pico del producto principal.

    automatizado · integrador
  6. 06

    Decisión de liberación

    Pico principal ≥ 99,0 % de área: el lote pasa a la confirmación ESI-MS. Por debajo del 99,0 %: el lote se rechaza, se investiga el lote de síntesis y el responsable de control de calidad firma el aviso de rechazo. Sin excepciones, sin redondeo.

    Responsable de CC · firmado
Anatomía de un cromatograma

Leyendo lo que la traza realmente dice.

Un cromatograma de liberación limpio tiene una línea de base plana, un pico principal nítido y muy poco más. Aquí se explica cómo leer cada parte, incluidas las que la mayoría de los «COA» de los proveedores ocultan mediante recorte.

HPLC · IGF-1 LR3 · Lot LR3-2025-A47 · C18 / 220 nm Pico principal · 99.42%
0510152025 min

Pico del producto principal

Agudo, único, alto. Área = <b>99,42 %</b> de la señal total integrada. Retención 13,4 min: coincide con el estándar de referencia dentro de ±0,05 min.

Impurezas relacionadas con el proceso

Tres picos menores visibles a 6,6, 13,0 y 16,5 min. Área combinada = <b>0,58 %</b>. Probablemente secuencias de deleción y subproductos de oxidación; identificados por ESI-MS en el siguiente ensayo.

Línea de base

Plana, poco ruido (deriva < 0,0005 AU/min), sin joroba continua por contaminación del solvente, sin pico «basura» de elución tardía después del producto principal. El cromatograma vuelve limpiamente a la línea de base.

Parámetros del método

Las especificaciones exactas con las que trabaja el laboratorio.

Si no puede reproducir el ensayo a partir de los parámetros, el COA es opaco. Aquí está todo lo que necesita para repetir la ejecución en su propio instrumento.

Fase estacionaria

ColumnaC18 fase inversa, completamente end-capped
Dimensiones250 mm × 4.6 mm i.d.
Tamaño de partícula5 µm
Tamaño de poro100 Å
Carga de carbono≈ 17%
Temperatura30 °C (horno de columna)

Fase móvil y gradiente

Solvente AH₂O + 0.1% TFA
Solvente BAcetonitrilo + 0,1 % TFA
Caudal1.0 mL/min
Gradiente5 % → 95 % B en 25 min
En espera95 % B durante 5 min
Re-equilibración5 % B durante 8 min

Detección e integración

DetectorUV de matriz de diodos (DAD)
λ principal220 nm (enlace peptídico)
λ secundaria280 nm (Trp / Tyr)
Frecuencia de muestreo10 Hz
IntegraciónValle a valle, con corrección de línea de base
InformeÁrea-% relativa al total

Muestra e inyección

DiluyenteFase móvil A
ConcentraciónSolución de trabajo 1 mg/mL
Volumen de inyección20 µL (bucle completo)
Réplicas3 por lote, se reporta ± desviación estándar relativa
Idoneidad del sistemaCriterios USP <621>, cada lote
Estándar de referenciaIndependiente, trazable por lote
Por qué el 99 % no es «básicamente igual que el 95 %»

La carga de impurezas se duplica entre cada grado.

Un péptido «95 % puro» lleva diez veces la masa de impurezas de un lote «99,5 % puro». En un vial de 5 mg, eso son 250 µg de material no identificado frente a 25 µg. En un experimento de cultivo celular, esa diferencia es el experimento.

95%"grado de investigación"
Carga de impurezas50 mg/g
En un vial de 5 mg250 µg

Base común para péptidos del mercado gris. La identidad es plausible; la reproducibilidad, no.

98%piso de proveedor genérico
Carga de impurezas20 mg/g
En un vial de 5 mg100 µg

El umbral de liberación predeterminado para la mayoría de los proveedores de internet. Mejor, pero los truncamientos aún pasan sin detectar.

99%Piso de liberación de IGF1 Shop
Carga de impurezas10 mg/g
En un vial de 5 mg50 µg

Piso estricto. Cualquier valor inferior se rechaza y se investiga el lote de síntesis. Sin redondeo.

99.5%+liberación típica de IGF1 Shop
Carga de impurezas5 mg/g
En un vial de 5 mg25 µg

Donde caen la mayoría de nuestros lotes liberados realmente. La línea del 99 % es el piso, no la moda.

Lectura de los picos pequeños

Lo que normalmente significan los picos de impurezas.

Los picos menores en un cromatograma no son ruido aleatorio: cada uno lleva información sobre cómo salió la síntesis. Estos son los patrones que buscamos y lo que señalan de vuelta a la instalación de síntesis.

Patrón de picosCausa probableDesplazamiento de retenciónAcción
Hombro único, borde anterior del pico principal Contaminación por diastereómero o D-aminoácido ± 0.1–0.3 min Re-acoplar si > 0,3 %
Pico agudo antes del principal, desplazamiento de masa de número entero Truncamiento (residuo faltante) − 0.5–2.0 min Rechazar si > 0,5 %
Pico agudo después del principal, desplazamiento de +16 Da en MS Oxidación de metionina / Trp + 0.3–0.8 min Aceptable si < 0,5 %
Cola en el pico principal, desplazamiento de +1 Da en MS Desamidación de Asn / Gln + 0.05–0.2 min Investigar si > 0,3 %
Clúster de elución tardía después del pico principal Aductos TFA, restos de eliminadores + 1.0–3.0 min Cosmético, ≤ 0,2 %
Joroba de línea de base continua bajo todos los picos Contaminación del solvente, columna sucia n/a Re-equilibrar o reemplazar
Fallos críticos

Cuatro condiciones que rechazan el lote, sin excepción.

La regla de liberación no es una guía. Estas son las condiciones bajo las cuales el responsable de control de calidad firma un aviso de rechazo y el lote regresa a la instalación de síntesis para investigación.

F1

Pico principal por debajo del 99,0 % de área

El piso de liberación. Incluso el 98,97 % se rechaza. No existe «casi pasó», sin redondeo a dos cifras significativas, sin «lo liberaremos como el SKU de grado inferior»: el lote se devuelve.

F2

Pico único de impureza por encima del 0,5 %

Incluso cuando el pico principal supera el 99,0 %, una sola impureza relacionada por encima del 0,5 % se trata como un problema de síntesis que vale la pena investigar. Causa común: un truncamiento que el gradiente no separó completamente.

F3

Tiempo de retención desviado > 0,2 min respecto al de referencia

Si el pico principal eluye en un tiempo incorrecto en relación con el estándar de referencia trazable por lote, es probable que la molécula haya cambiado, ya sea por un error de secuencia o una modificación importante. La muestra se retiene pendiente de investigación por MS.

F4

Fallo de idoneidad del sistema

Los criterios USP <621>: placas teóricas, factor de cola, factor de capacidad, relación señal/ruido, se comprueban en un estándar de idoneidad del sistema antes de cada lote. Si la columna o el detector está derivando, no se corre ninguna muestra hasta que se restaure.

FAQ

Lo que los investigadores preguntan sobre la pureza HPLC.

¿Por qué detectar a 220 nm en lugar de 280 nm?
220 nm es la banda de absorción del propio enlace peptídico, por lo que cada residuo contribuye señal proporcionalmente a su contenido. 280 nm solo detecta Trp, Tyr y (débilmente) Cys, aceptable para cuantificación de proteínas, pero ciego a péptidos sin residuos aromáticos. Registramos ambas longitudes de onda e informamos 220 nm como el número de pureza canónico.
¿Podrían co-eluir dos impurezas bajo el pico principal?
En principio, sí, y es exactamente por eso que el HPLC se combina con ESI-MS. Un truncamiento o modificación co-eluyente inflará el número de porcentaje de área pero producirá un ion secundario en el espectro de masas. Nuestra liberación requiere que ambos ensayos pasen, no solo uno.
¿Por qué usar TFA en la fase móvil?
El TFA al 0,1 % actúa como modificador de formación de pares iónicos: neutraliza las cadenas laterales básicas (Lys, Arg, His) y produce picos agudos y simétricos en lugar de colas anchas. La desventaja es cierta supresión en MS, por lo que la misma muestra se re-corre para ESI-MS en una fuente compatible con TFA en lugar de basarse en la hiperfenación HPLC-MS.
¿Qué es una verificación de «idoneidad del sistema»?
Una corrida previa de lote (normalmente 5-6 inyecciones de un estándar de referencia) utilizada para confirmar que el instrumento cumple la especificación USP <621>: placas teóricas > 2000, cola del pico < 1,5, factor de capacidad 2-10, relación señal/ruido > 50. Si algún criterio falla, no se inyecta ninguna muestra de cliente hasta que se restablezca la columna o el detector.
¿Son reales o estilizados los cromatogramas de sus COA?
Real. Cada COA que publicamos incorpora la salida real del integrador para ese lote específico: tiempos de retención de picos, áreas, porcentajes y notas. El laboratorio firma el archivo y enviamos una copia sin modificar con el pedido. El diagrama de «anatomía» en esta página es un SVG estilizado; los cromatogramas en los COA no lo son.
¿Publica el certificado de acreditación del laboratorio?
Sí: los compradores institucionales pueden solicitar el certificado de alcance ISO/IEC 17025:2017, los informes de validación de métodos y los resultados de pruebas de aptitud de la ronda más reciente. Envíenos un correo y los reenviaremos bajo NDA.