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HPLCワークフロー

逆相HPLC、 参照標準に対して220 nmで。

リリースされたすべてのロットはグラジエント溶出、220 nm UV検出のC18カラムでプロファイリングされ、面積%純度として定量されます。クロマトグラムはすべての出荷物と共に提供されます。

≥ 99%リリース純度下限
220 nm検出波長
C18逆相カラム
エンドツーエンドワークフロー

合成バッチからリリースされたロットまでの6ステップ。

すべてのペプチドは同じパスを経由します。特急レーン、社内ショートカット、「これで良さそう、発送しろ」はありません。いずれかのステップでの失敗がバッチを棄却します。

  1. 01

    サンプル受領と管理連鎖

    凍結乾燥ペプチドは合成施設から密封された状態で届きます。ロットID、バッチ、理論配列、MWが記録されます。バイアルは2つのアリコートに分割:1つは分析用、1つはアーカイブ用(24ヶ月保持)。

    ≈ 0.5時間 · 受取ログ
  2. 02

    溶解と希釈

    2 mgのペプチドを移動相A(0.1% TFA水溶液)1 mLに軽くボルテックスして溶解。1 mg/mL作業濃度に希釈。カラムを詰まらせる微粒子を除去するため13,000 gで5分間遠心分離。

    ≈ 0.3時間 · 1 mg/mL準備
  3. 03

    カラム平衡化

    250 × 4.6 mm C18カラム(5 µm、100 Å)を95% A / 5% B、1.0 mL/min、30 °Cでベースラインドリフトが< 0.0005 AU/minになるまで平衡化。3回のブランク注入で圧力は ± 5 bar以内で安定。

    ≈ 0.5時間 · ベースラインまで
  4. 04

    注入とグラジエント実行

    20 µLインジェクションループ、フルループ充填。25分間で5%から95%アセトニトリル(0.1% TFA)の直線グラジエント、95%で5分保持、2分で初期に戻し、8分間再平衡化。総サイクル40分。

    ≈ 0.7時間 · 40分サイクル
  5. 05

    検出と積分

    ダイオードアレイUV検出器、220 nm(ペプチド結合)のプライマリトレース、280 nm(Trp/Tyr)のセカンダリ。ピークはバレー・ツー・バレーで積分、ベースライン補正、メイン製品ピークに対する面積%として報告。

    自動化・インテグレーター
  6. 06

    リリース決定

    メインピーク ≥ 99.0%面積:ロットはESI-MS確認に進む。99.0%未満:ロットは棄却され、合成バッチが調査され、QCオフィサーが棄却通知に署名。例外なし、丸め込みなし。

    QCオフィサー · 署名済み
クロマトグラムの構造

トレースが実際に言っていることを読む。

きれいなリリースクロマトグラムとは、フラットなベースライン、鋭いメインピーク、そしてほとんど何もない状態です。クロマトグラムの各部分の読み方を説明します — 多くのベンダーの「COA」がトリミングで隠している部分も含めて。

HPLC · IGF-1 LR3 · Lot LR3-2025-A47 · C18 / 220 nm メインピーク · 99.42%
0510152025 min

メイン製品ピーク

鋭く、単一で、高い。面積 = 総積分シグナルの<b>99.42%</b>。保持時間13.4分 — 参照標準と ± 0.05分以内で一致。

プロセス関連の不純物

6.6、13.0、16.5分に3つの微小ピークが見えます。合計面積 = <b>0.58%</b>。おそらく欠失配列と酸化副産物;次のアッセイでESI-MSによって同定。

ベースライン

フラット、低ノイズ(ドリフト < 0.0005 AU/min)、溶媒汚染によるローリングハンプなし、メイン製品後の遅い溶出「ゴミ」ピークなし。クロマトグラムはベースラインにきれいに戻ります。

方法パラメーター

ラボが実行する正確な仕様。

パラメーターからアッセイを再現できない場合、COAは不透明です。ご自身の装置で実行を繰り返すために必要なすべてを以下に示します。

固定相

カラムC18逆相、完全エンドキャッピング
寸法250 mm × 4.6 mm i.d.
粒子サイズ5 µm
細孔サイズ100 Å
炭素負荷≈ 17%
温度30 °C(カラムオーブン)

移動相とグラジエント

溶媒AH₂O + 0.1% TFA
溶媒Bアセトニトリル + 0.1% TFA
流量1.0 mL/min
グラジエント25分間で5%→95% B
保留5分間95% B
再平衡化8分間5% B

検出と積分

検出器ダイオードアレイUV(DAD)
プライマリ λ220 nm(ペプチド結合)
セカンダリ λ280 nm(Trp / Tyr)
サンプリングレート10 Hz
積分バレー・ツー・バレー、ベースライン補正
報告総量に対する面積%

サンプルと注入

希釈剤移動相A
濃度1 mg/mL作業溶液
注入量20 µL(フルループ)
複製1ロットあたり3回、相対SD±を報告
システム適合性USP <621>基準、すべてのバッチ
参照標準独立、ロットトレーサブル
99%が「基本的に95%と同じ」でない理由

すべてのグレード間で不純物負荷は2倍になります。

「純度95%」のペプチドは「純度99.5%」のロットの10倍の不純物質量を含みます。5 mgバイアルでは、未同定物質250 µg対25 µgの差です。細胞培養実験では、その差が実験そのものを左右します。

95%「研究グレード」
不純物負荷50 mg/g
5 mgバイアル内250 µg

グレーマーケットペプチドの一般的な下限。同一性は妥当;再現性は保証されません。

98%一般的なベンダーの下限
不純物負荷20 mg/g
5 mgバイアル内100 µg

ほとんどのインターネットベンダーのデフォルトのリリース閾値。より良い — しかし切断はまだ検出されずに通過します。

99%IGF1 Shopリリース下限
不純物負荷10 mg/g
5 mgバイアル内50 µg

ハード下限。それ以下はすべて棄却され合成バッチが調査されます。丸め込みなし。

99.5%+典型的なIGF1 Shopリリース
不純物負荷5 mg/g
5 mgバイアル内25 µg

リリースされたロットのほとんどが実際に位置する場所。99%ラインは下限であり、最頻値ではありません。

小さいピークを読む

不純物ピークが通常意味すること。

クロマトグラムの微小ピークはランダムノイズではありません — それぞれが合成がどのように進んだかについての情報を持っています。当社が探すパターンとそれが合成施設に何をシグナルするかを以下に示します。

ピークパターン考えられる原因保持時間シフトアクション
単一ショルダー、メインピークの前縁 ジアステレオマーまたはD-アミノ酸汚染 ± 0.1–0.3 min > 0.3%の場合再カップリング
メインより早い鋭いピーク、整数質量シフト 切断(欠落残基) − 0.5–2.0 min > 0.5%の場合棄却
メインより遅い鋭いピーク、+16 Da MSシフト メチオニン / Trp酸化 + 0.3–0.8 min < 0.5%なら許容可
メインピークのテール、+1 Da MSシフト Asn / Gln脱アミド化 + 0.05–0.2 min > 0.3%の場合調査
メインピーク後の遅い溶出クラスター TFAアダクト、残留スカベンジャー + 1.0–3.0 min 化粧品、≤ 0.2%
すべてのピークの下の転がるベースラインのこぶ 溶媒汚染、汚れたカラム n/a 再平衡化または交換
ハード失敗

ロットを棄却する4つの条件、オーバーライドなし。

リリースルールはガイドラインではありません。QCオフィサーが棄却通知に署名してロットが調査のために合成施設に返送される条件です。

F1

メインピーク 面積99.0%未満

リリース下限。98.97%でも棄却されます。「ほぼ合格」なし、2有効桁への丸め込みなし、「低グレードSKUとしてリリースする」なし — バッチは返送されます。

F2

0.5%を超える単一不純物ピーク

メインピークが99.0%をクリアしても、0.5%を超える単一の関連不純物は調査に値する合成問題として扱われます。一般的な原因:グラジエントで完全に分離できなかった切断。

F3

参照との保持時間偏差 > 0.2分

メインピークがロットトレーサブル参照標準に対して誤った時間に溶出する場合、分子が変化した可能性があります — 配列エラーまたは大きな修飾。MS調査が保留中のサンプルが保持されます。

F4

システム適合性失敗

USP <621>基準 — 理論段数、テーリング係数、容量係数、シグナル対ノイズ — はすべてのバッチ前にシステム適合性標準で確認されます。カラムまたは検出器がドリフトしている場合、回復するまでサンプルを実行しません。

よくある質問

研究者がHPLC純度について尋ねること。

280 nmではなく220 nmで検出する理由は?
220 nmはペプチド結合自体の吸収帯であり、すべての残基が含有量に比例してシグナルに寄与します。280 nmはTrp、Tyr(弱くCys)しか検出できず、タンパク質定量には適していますが芳香族残基のないペプチドには盲点です。両波長を記録し、220 nmを正規の純度値として報告します。
2つの不純物がメインピーク下で共溶出する可能性はありますか?
原則的にはそうです — これがまさにHPLCがESI-MSとペアになる理由です。共溶出する切断または修飾は面積%数値を膨らませますが、マススペクトルに二次イオンを生成します。当社のリリースは両方のアッセイがクリアすることを要求し、一方だけではありません。
なぜ移動相にTFAを使用しますか?
0.1%のTFAはイオンペアリング修飾剤として機能します — 塩基性側鎖(Lys、Arg、His)を中和し、広いテールではなく鋭く対称的なピークを生成します。欠点はMSの抑制であり、そのためHPLC-MSのハイフネーションに頼るのではなく、TFA互換ソースでESI-MSのために同じサンプルを再実行します。
「システム適合性」チェックとは何ですか?
バッチ前の短い測定実行(通常は参照標準を5〜6回注入)で、装置がUSP <621>仕様内で動作していることを確認します:理論段数 > 2000、ピークテーリング < 1.5、容量係数2〜10、シグナル対ノイズ > 50。いずれかの基準が不合格の場合、カラムまたは検出器が回復するまでクライアントサンプルは注入しません。
COAのクロマトグラムは実際のものですか、それとも様式化されたものですか?
実際のものです。当社が公開するすべてのCOAはその特定のロットの実際のインテグレーター出力を埋め込んでいます — ピーク保持時間、面積、パーセンテージ、メモ。ラボがファイルに署名し、当社は注文と共に未修正のコピーを出荷します。このページの「構造」図は様式化されたSVGです;COA内のクロマトグラムはそうではありません。
ラボの認定証を公開していますか?
はい — 機関購入者はISO/IEC 17025:2017スコープ証明書、方法バリデーション報告書、最新ラウンドの技能試験結果をリクエストできます。メールしていただければNDA下で転送します。