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エンドトキシン試験

LALアッセイ: 全ロット < 0.5 EU/mg。

細菌性エンドトキシン汚染は細胞株実験を静かに破壊し、すべての下流アッセイを混乱させます。当社はすべてのペプチドリリースを、5 EU/mgの薬局方限界を大幅に下回るキネティック比色LALでスクリーニングします。

< 0.5EU/mgリリース上限
10×薬局方限界以下
LALゲル凝固 / キネティック
エンドツーエンドワークフロー

サンプルアリコートからリリースされたロットまでの6ステップ。

LALアッセイは容赦ありません — 単一の汚染されたチップまたは水分の痕跡のあるガラスバイアルは偽陽性を生む可能性があります。以下のすべてのステップは結果が報告される前にそれらの失敗モードを排除することを中心に構築されています。

  1. 01

    デパイロジェン処理済み作業スペース

    すべてのガラス器具は250 °Cで30分以上焼成(LAL水同等のデパイロジェン処理)。ピペットチップとマイクロプレートはエンドトキシンフリー認証済み(< 0.005 EU/デバイス)。フードはセットアップ前にLALグレード水で拭き取り。

    準備 · 250 °Cで30分
  2. 02

    サンプル希釈

    2 mgのペプチドをLALグレード水2 mLに溶解(1 mg/mLストック)。0.001 mg/mLまで1:10連続希釈し、標準曲線全域をカバーして複数濃度でのアッセイ阻害・増強を確認。

    希釈系列 · 1:10
  3. 03

    標準曲線セットアップ

    コントロール標準エンドトキシン(CSE、RSEにロットトレーサブル)をLALグレード水で5点希釈:50、5、0.5、0.05、0.005 EU/mL。各標準を3連で測定。ネガティブコントロール(LAL水ブランク)とPPC(陽性製品コントロール)ウェルを追加。

    5標準品・3連測定
  4. 04

    LAL試薬と基質

    事前に温めたサンプル50 µL + LAL試薬50 µL + 発色基質(Boc-Leu-Gly-Arg-pNA)を各ウェルに添加。プレートをシールし、37 °C ± 0.5 °Cに事前平衡化したプレートリーダーに移送。

    100 µLウェル・37 °C
  5. 05

    キネティック読み取り

    405 nmの吸光度を最大90分間30秒ごとに記録。発色開始時間は吸光度が閾値(ブランクより ΔOD ≥ 0.2)を超えた時点として定義。発色が早い = エンドトキシンが高い。

    ≈ 1.5時間 · 405 nmキネティック
  6. 06

    回帰とリリース

    対数/対数フィットの標準曲線;R² ≥ 0.98必要。PPC回収率は50〜200%内。サンプル濃度を逆算し、ペプチド質量で正規化。≤ 0.5 EU/mg:リリース。それ以上:棄却され合成バッチを調査。

    QCオフィサー · 署名済み
キネティックLAL測定の構造

1つの標準曲線、1つのサンプルポイント、2つの参照線。

すべてのリリースは新たにフィットされた回帰直線上の単一の点です。傾き、切片、R²、回収率 — すべての4つが逆算濃度が報告される前にクリアする必要があります。

Kinetic LAL · IGF-1 LR3 · Lot LR3-2025-A47 · 405 nm @ 37 °C サンプル · 0.18 EU/mg
0.0050.050.5550 EU/mL

標準曲線(5点)

<b>50 EU/mL</b>から<b>0.005 EU/mL</b>までの5点CSE希釈。対数/対数回帰傾き ≈ −0.31、R² = <b>0.9994</b>。各標準を3連で実行して、サンプルをフィットする前に曲線を固定。

サンプルと逆算

サンプルの発色開始時間は0.05〜0.5 EU/mL標準間。希釈とペプチド質量を補正後に<b>0.18 EU/mg</b>に逆算 — 0.5 EU/mgリリース上限内。

参照線

<b>黄色破線</b>:アッセイLOD 0.005 EU/mL。<b>赤色破線</b>:0.5 EU/mgリリース上限。その間はすべて報告可能;赤の右側はすべて即時棄却通知を発生させます。

方法パラメーター

試薬、プレート、キネティック読み取り、受入。

契約ラボが実行するとおりの完全なキネティック比色LALセットアップ。USP <85> / EP 2.6.14準拠。

試薬と参照

溶解物Limulus polyphemus、キネティック比色
感度(λ)0.005 EU/mL
CSE参照USP RSEへのロットトレーサブル
基質Boc-Leu-Gly-Arg-pNA、発色性
LAL水< 0.005 EU/mL 認定済み
公定法USP <85> / EP 2.6.14

プレートとサンプル

プレート形式96ウェル、パイロジェンフリー認証済み
サンプル量1ウェルあたり50 µL
試薬量1ウェルあたり50 µL
標準品5点、3連測定(15ウェル)
サンプル希釈4段階(1:10シリーズ)
PPCウェル1検体希釈あたり2回

キネティック読み取り

波長405 nm
温度37 °C ± 0.5 °C
読み取り間隔30秒ごと
最大実行時間90分
発色閾値ブランクより ΔOD ≥ 0.2
曲線適合対数/対数線形回帰

受入基準

標準曲線 R²≥ 0.98
傾きウィンドウ−0.20 to −0.45
PPC回収率50% – 200%
ネガティブコントロール発色 > 90分(シグナルなし)
サンプル希釈2つの測定値は50%以内で一致する必要があります
リリース上限≤ 0.5 EU/mg
フラスコ内のEU/mg数値が意味すること

COAの数値をベンチに換算。

0.5 vs. 0.05 EU/mgはラベル上では些細な差に聞こえますが、細胞に到達する量を追うと意味が変わります。以下の具体的な数値は、1 mg/mLストックを溶解後、典型的な5 mLウェルで100 nMに希釈した場合を前提としています。

5 EU/mg薬局方上限
100 nMウェル内~0.05 EU/mL
TLR4への影響最大活性化

注射剤薬局方には許容されますが、細胞生物学には致命的です。初代培養および免疫アッセイでは、試験化合物に起因するファントムシグナルが発生します。

1 – 5 EU/mg典型的な汎用ベンダー
100 nMウェル内~0.01 EU/mL
TLR4への影響最大以下だが実在する

テストを行うベンダーの標準下限。細胞株作業はほとんど問題ない;初代単球、マクロファージ、DCが関与するものはすべて交絡します。

< 0.5 EU/mgIGF1 Shopリリース下限
100 nMウェル内< 0.005 EU/mL
TLR4への影響検出限界以下

ハード上限 — それ以上はすべて棄却され合成バッチが調査されます。HEK-Blueレポーターアッセイでのお TLR4の活性化閾値以下。

< 0.25 EU/mg典型的なIGF1 Shopリリース
100 nMウェル内< 0.0025 EU/mL
TLR4への影響事実上ゼロ

当社の実際のロットのほとんどが位置する場所。初代培養と自然免疫アッセイを含むin-vitro作業に対して事実上エンドトキシンフリー。

エンドトキシンが実際にどこから来るか

LAL数値が捕捉する5つの汚染経路。

エンドトキシンは合成副産物ではありません — チェーンのどこかからの侵入です。すべてのCOAがロットをテストします;ソースを理解することがバッチごとに数値を低く保つことです。

ソース作用機序典型的な寄与軽減
合成水 水道水はグラム陰性バイオフィルムから1〜5 EU/mLのLPSを含んでいます 制御されない場合EU/mgが支配的 LALグレード水必須
ガラス器具とバイアル 結合LPSは洗剤洗浄に耐性;熱分解のみが分解できます 0.1 – 0.5 EU/mg 容器あたり 250 °C / 30分間デパイロジェン処理
凍結乾燥環境 凍結乾燥中に堆積した空中浮遊塵埃・細菌断片 0.05 – 0.2 EU/mg サイクルあたり HEPAフィルター付き凍結乾燥機、密閉サイクル
溶解水(お客様提供) 静菌水と通常の水はLPS量においてオーダーが異なります ベンチで最大1 EU/mL追加 USPグレードのBAC水、使い捨て
バイアルの再分注 / 共有 開封したストックへの細菌定着は数日でLPSを再導入します 変動、大きくなる可能性あり 一度分注して凍結、一回解凍のみ
ピペットチップとプレート パイロジェンフリー認証なしの場合の製造残渣 0.005 – 0.05 EU/mL バックグラウンド 認証済みの消耗品のみ使用
ハード失敗

アッセイを無効化またはロットを棄却する4つの条件。

リリース決定はバイナリであり、アッセイ自体に合否基準があります。いずれかのチェーンが壊れた場合、結果は報告されません — 実行が繰り返されるかバッチが返送されます。

F1

サンプル > 0.5 EU/mg

リリース上限。それ以上でロットは棄却され、合成ラインが汚染源を調査され、是正措置後に契約ラボが再試験します。「研究グレードとして販売」というダウングレードはありません。

F2

PPC回収率50〜200%外

陽性製品コントロールはペプチドマトリクスがLALカスケードを阻害または増強していないことを確認します。50〜200%外の回収率は結果が解釈不能であることを意味します;数値が報告される前にサンプルを再希釈してアッセイを再実行します。

F3

標準曲線 R² < 0.98

0.98未満では回帰が逆算を正当化するほど厳密ではありません。CSEストックから標準品を再調製し、プレートを再ロードして、アッセイを再開します。不良曲線でのサンプル読み取りは行いません。

F4

90分前にネガティブコントロールが発火

LAL水 + 試薬のみを含むブランクウェルは90分間の実行全体で閾値以下に留まる必要があります。いかなる発色も、LAL水、試薬またはフードが汚染されていることを意味します — アッセイ全体が無効化され、材料を新鮮なものに調達します。

よくある質問

研究者がエンドトキシンについて尋ねること。

なぜリコンビナントファクターC(rFC)の代わりにLALを使用しますか?
rFCはEP 2.6.32 / USP <86>以降の有効な薬局方代替品であり、カブトガニの収穫なしに同等の結果を生み出します。当社はCOAにrFC結果を明示的に記載した上で、契約ラボの認定方法によりいずれも受け入れます。リリース上限と受入基準は同一です。
ゲル凝固、比濁、比色 — 違いは何ですか?
ゲル凝固は元祖(視覚的yes/no)、比濁は凝固形成による濁りを測定、比色は凝固酵素で切断された合成基質の色を測定します。当社はダイナミックレンジ(5桁)、定量的出力、0.5 EU/mgリリース閾値周辺のより厳密な精度のためにキネティック比色を使用します。
EUとLPS pgの実際の違いは何ですか?
1 EU(エンドトキシン単位)≈ 大腸菌O111:B4 LPSの100 pgに相当しますが、LPSケモタイプによって関係は変わります。EUはUSP/EP参照規格に遡及可能な標準化活性単位であり、すべてのリリース証明書で使用されます。pg単位では結果を報告しません。
汚染されたバッチからエンドトキシンを除去できますか?
原則的には:限外ろ過、ポリミキシンBアフィニティ、イオン交換。ペプチドベンダーの実際には:いいえ — デパイロジェン化プロセスはLPSと共にペプチドを分解し、汚染されたバッチは棄却・再合成されます。上流での予防が唯一の実行可能なアプローチです。
10倍しか低くないのに0.5 EU/mgが「大幅に低い」理由は?
薬局方限界は70 kgのヒトで計算された注射剤の投与量あたりです。in-vitro研究では関連する数値はウェル内の濃度であり、通常0.001〜0.01 mg/mLです — つまり0.5 EU/mgはウェル内で既に0.005 EU/mLに相当し、TLR4の活性化閾値以下です。10倍の余裕がアッセイを細胞培養域に安全に運ぶものです。
COAのLAL数値はどのくらいの期間有効ですか?
COAの安定性プロファイル(凍結乾燥、< −20 °C)に従ってバイアルが密封・保管されている限り、無期限です。エンドトキシンは化学的に安定しています;開封後に変わるのは滅菌性であり、細菌の定着は新しいエンドトキシンを産生します。COA番号はリリース時のバイアル内容物の上限であり、永遠の保証ではありません。