How much bacteriostatic water do I add to a 5 mg vial of BPC-157?

This reference standardises on 2 mL of bacteriostatic water for a 5 mg vial, giving 2.5 mg/mL. On a U-100 insulin syringe one unit is 0.01 mL, so one unit carries 25 µg of peptide and the full 0.5 mL barrel carries 1.25 mg. Any volume works chemically — 1 mL gives 5 mg/mL, 5 mL gives 1 mg/mL — because the volume changes the concentration, never the total mass of peptide in the vial. Pick the volume that makes your arithmetic round.

What is the difference between bacteriostatic water and sterile water for injection?

Sterile water for injection (WFI) is preservative-free: once the septum is pierced the vial has no defence against microbial ingress, so it is a single-session solvent. Bacteriostatic water is the same water with 0.9% benzyl alcohol added as a bacteriostatic preservative, which is what allows repeated access to the same vial for up to 28 days at +4 °C. Use WFI when the preservative would interfere with the assay or with a sensitive sequence; use bacteriostatic water for anything you will access more than once.

How long does a reconstituted peptide last in the fridge?

IGF1 Shop states 14 to 28 days at +4 °C for a reconstituted solution, depending on the sequence, with the 28-day figure tied to the bacteriostatic preservative in the solvent. Preservative-free water shortens that window considerably. For anything longer, aliquot into single-use volumes and freeze at −20 °C or −80 °C rather than repeatedly re-entering one refrigerated vial.

How do I convert mg/mL into insulin-syringe units?

A U-100 syringe is graduated so that 100 units equal 1 mL; one unit is therefore 0.01 mL, or 10 µL. Multiply the concentration in mg/mL by 0.01 to get the mass carried by one unit. A 2.5 mg/mL solution carries 25 µg per unit; a 5 mg/mL solution carries 50 µg per unit. Note that the 0.5 mL barrel supplied in the IGF1 Shop injection kit holds 50 of those units, not 100 — the 100-unit graduation belongs to the 1 mL barrel.

Can I shake the vial to make the powder dissolve faster?

No. Shaking drives air into the solution, generates foam at the air-liquid interface, and mechanically shears longer sequences. Deliver the solvent slowly down the inner wall of the vial rather than onto the cake, then let the vial stand for a minute or two and swirl it gently. Most peptides in this catalog dissolve without any agitation at all once the solvent has wetted the cake.

My reconstituted solution is cloudy or has visible particles — what now?

Stop and do not use it. A correctly reconstituted peptide solution is optically clear. Persistent haze, floating fibres or sediment that will not redissolve at room temperature indicate aggregation, incomplete dissolution or contamination. Photograph the vial, note the lot number etched on the cap and printed on the Certificate of Analysis, and contact support. One exception: GHK-Cu produces a deep blue solution because of the copper(II) chelate — that colour is the compound, not a defect.

Can I freeze a reconstituted peptide?

Yes, provided you aliquot first. The damage in frozen storage does not come from the cold, it comes from the freeze-thaw cycle: each thaw concentrates solutes at the ice boundary and stresses the peptide. Split the reconstituted solution into single-use volumes immediately after reconstitution, freeze those at −20 °C or −80 °C, and thaw each one once. Never refreeze a thawed aliquot.

Does the reconstitution volume change how much peptide I have?

No. The vial contains the mass printed on the label and on the Certificate of Analysis regardless of what you add to it. Adding 1 mL rather than 2 mL to a 5 mg vial produces 5 mg/mL instead of 2.5 mg/mL — twice the concentration, the same 5 mg of peptide. Volume is a unit-conversion decision, not a potency decision.

Référence de laboratoire · Reconstitution

Comment reconstituer des peptides, sans deviner le volume.

Tout ce qui se passe après le départ du transporteur : quel solvant correspond à quel flacon, le calcul qui transforme des milligrammes par flacon en unités sur une seringue, une référence de volume par flacon pour l'ensemble du catalogue, et combien de temps la solution tient réellement une fois le culot dissous. Référence de laboratoire uniquement — aucune indication d'administration, aucun dosage.

Aller au tableau des volumes Eau bactériostatique

27Composés dans le tableau des volumes

0.9%Alcool benzylique dans l'eau bactériostatique

28 dFenêtre d'utilisation multiple à +4 °C

10 µLUne unité sur une seringue U-100

Réponse rapide

En un paragraphe : Pour reconstituer un peptide lyophilisé, laissez le flacon et le solvant revenir à température ambiante, désinfectez les deux septums à l'alcool isopropylique à 70%, prélevez un volume mesuré d'eau bactériostatique dans une seringue stérile à usage unique, laissez-le s'écouler lentement le long de la paroi intérieure du flacon de peptide plutôt que sur le culot, puis faites tourner le flacon — sans jamais le secouer — jusqu'à ce que la solution soit optiquement limpide. Le volume choisi détermine la concentration, pas la quantité de peptide : 5 mg dans 2 mL donnent 2.5 mg/mL, soit 25 µg par unité sur une seringue U-100. Conservez le flacon reconstitué debout à +4 °C et utilisez-le dans les 14 à 28 jours selon la séquence, ou répartissez-le en volumes à usage unique et congelez-le à −20 °C.

Solvant par défaut : l'eau bactériostatique — eau stérile pour préparations injectables additionnée de 0.9% d'alcool benzylique, ce qui permet d'accéder à plusieurs reprises au même flacon.
La seule équation : concentration = masse dans le flacon ÷ volume de solvant ajouté. Rien d'autre sur cette page ne change cela.
Conversion d'unité : une seringue U-100 place 100 unités dans 1 mL, donc une unité vaut 0.01 mL, soit 10 µL.
Conservation après reconstitution : 14–28 jours à +4 °C ; répartissez et congelez pour toute durée plus longue, et ne recongelez jamais un aliquot décongelé.
Cadre légal : composés de qualité recherche destinés exclusivement à un usage de laboratoire in vitro, non destinés à un usage humain ou vétérinaire.

Principes de base

Ce qu'est réellement la reconstitution.

Un peptide n'arrive pas sous forme de poudre par commodité. Il se présente ainsi parce que l'eau est la voie la plus rapide vers l'hydrolyse, la désamidation et l'agrégation, et que la lyophilisation l'élimine. La reconstitution est l'inversion délibérée et maîtrisée de cette étape — et le moment où un lot ayant passé avec succès tous les tests de libération devient votre responsabilité.

Le culot

La lyophilisation élimine l'eau par sublimation sous vide et laisse un solide poreux : le culot lyophilisé. Un culot correct est uniforme et blanc, occupe à peu près le volume qu'occupait la solution, et ne présente ni affaissement, ni rétraction par rapport au verre, ni éclat cristallin. Son aspect est la première information sur la qualité que vous obtenez, et elle ne coûte rien.

Le vide

Le flacon est scellé sous vide partiel à la fin du cycle de lyophilisation. Cette dépression explique pourquoi le solvant est aspiré presque tout seul lorsque l'aiguille pénètre, et pourquoi un flacon qui n'offre aucune résistance du tout doit être considéré avec suspicion — un joint défaillant pendant le transport signifie que le culot a été exposé à l'humidité atmosphérique.

Le solvant

Le liquide que vous ajoutez remplit trois fonctions à la fois : il dissout le culot, il fixe la concentration pour le reste de la vie du flacon, et il protège — ou non — le contenu des micro-organismes que votre aiguille introduit à chaque entrée ultérieure. Une seule de ces trois fonctions relève de la chimie. Les deux autres relèvent de la comptabilité et de l'hygiène, et c'est là que se produisent la plupart des erreurs.

Choix du solvant

Eau bactériostatique, WFI ou acide.

Quatre liquides reviennent dans la pratique. Trois d'entre eux conviennent dans des circonstances précises, et l'un d'eux n'est presque jamais le bon choix. La question déterminante n'est pas la solubilité — la plupart des composés de ce catalogue se dissolvent dans l'eau pure — mais le nombre de fois où le septum sera percé, et si un conservateur risque d'interférer avec ce que vous mesurez.

Eau bactériostatique — le choix par défaut

Composition	WFI stérile + 0.9% d'alcool benzylique
Fenêtre d'utilisation multiple	Jusqu'à 28 jours après la première perforation
Conservation après ouverture	+4 °C
À utiliser quand	Le flacon sera ouvert plus d'une fois
À éviter quand	L'alcool benzylique risquerait de fausser l'analyse
Article du catalogue	Flacon de 20 mL, USD 14

Eau stérile pour préparations injectables

Composition	Eau, sans conservateur
Fenêtre d'utilisation multiple	Aucune — usage unique
Conservation après ouverture	Jeter le reste
À utiliser quand	Le flacon entier est consommé ou réparti en une seule fois
À éviter quand	Des accès répétés sur plusieurs jours sont prévus
Rôle habituel	Culture cellulaire et travaux analytiques

Acide acétique à 0.6%

Composition	Acide acétique dilué dans de l'eau stérile
Objectif	Solubiliser les séquences qui résistent à un pH neutre
Cas typique	IGF-1 LR3
Méthode	Dissoudre d'abord dans l'acide, diluer ensuite
Conservateur	Aucun — à traiter comme un usage unique
Attention	Non interchangeable avec l'eau bactériostatique

Solution saline à 0.9% — le mauvais choix par défaut

Composition	Chlorure de sodium à 0.9% dans l'eau
Conservateur	Généralement aucun
Problème	La force ionique peut favoriser l'agrégation
Fenêtre d'utilisation multiple	Aucun dans la formulation simple
À utiliser quand	Un protocole l'exige spécifiquement
Sinon	Préférer l'eau bactériostatique

La règle pratique est simple. Si vous comptez ouvrir le flacon une seule fois, une eau sans conservateur convient et est même sans doute plus propre. Si vous comptez l'ouvrir lundi puis à nouveau jeudi, l'alcool benzylique présent dans l'eau bactériostatique accomplit un travail qu'aucun autre élément du protocole ne fait. La seule question de solvant qui soit réellement spécifique à un composé est la solubilité à pH neutre, et dans ce catalogue cela ne concerne qu'une seule entrée — IGF-1 LR3. Tout le reste se dissout dans l'eau.

Le calcul

Des milligrammes dans le flacon aux unités sur la seringue.

C'est la partie que l'on se trompe le plus souvent, et c'est aussi la partie la plus simple une fois posée noir sur blanc. Il y a deux équations et une conversion d'unité. Rien sur cette page n'est plus compliqué que cela.

Les deux équations

Concentration	C = m ÷ V
Volume à prélever	V = m ÷ C
m	Masse indiquée sur le flacon (mg)
V	Volume de solvant ajouté (mL)
C	Concentration obtenue (mg/mL)
Invariant	m ne change jamais. Seul C change.

Graduation U-100

1 mL	100 unités
1 unité	0.01 mL = 10 µL
10 unités	0.10 mL = 100 µL
25 unités	0.25 mL
50 unités	0.50 mL
Corps de seringue du kit	0.5 mL = 50 unités pleine échelle

Exemples chiffrés

Trois flacons, trois concentrations.

Les trois mêmes lignes de calcul appliquées à un flacon de 5 mg, un flacon de 1 mg et un flacon de 10 mg. Notez que le plus petit flacon produit la concentration la plus faible et donc le plus d'unités de seringue par milligramme — les petits flacons sont plus faciles à mesurer, pas plus difficiles.

BPC-157

5 mg / vial

Cinq milligrammes de peptide lyophilisé dissous dans 2 mL d'eau bactériostatique donnent une solution à 2.5 mg/mL, la concentration de travail la plus courante de ce catalogue car elle tombe sur un chiffre rond de 25 µg par unité de seringue.

Masse dans le flacon: 5 mg
Solvant ajouté: 2.0 mL
Concentration: 2.5 mg/mL
Par unité U-100: 25 µg

Le corps de seringue complet de 0.5 mL de la seringue du kit contient 50 unités de cette solution, soit 1.25 mg de peptide — un quart du flacon.

Fiche du composé Exemple de COA

IGF-1 LR3

1 mg / vial

Un milligramme dans 1 mL donne 1 mg/mL et 10 µg par unité — la résolution la plus fine disponible sur une seringue à insuline standard, ce qui compte car c'est le flacon de plus faible masse du catalogue.

Masse dans le flacon: 1 mg
Solvant ajouté: 1.0 mL
Concentration: 1 mg/mL
Par unité U-100: 10 µg

C'est la seule entrée du catalogue où le solvant par défaut n'est pas l'eau bactériostatique : dissoudre d'abord dans l'acide acétique à 0.6%, puis diluer si le protocole l'exige.

Fiche du composé Exemple de COA

3-GLP (Retatrutide)

10 mg / vial

Dix milligrammes dans 2 mL donnent 5 mg/mL et 50 µg par unité. Doubler la masse à volume constant double la concentration et divise par deux le nombre d'unités nécessaires pour la même quantité de peptide.

Masse dans le flacon: 10 mg
Solvant ajouté: 2.0 mL
Concentration: 5 mg/mL
Par unité U-100: 50 µg

Les peptides acylés se liant à l'albumine moussent plus facilement que les courtes séquences non modifiées. Versez le solvant lentement le long de la paroi et laissez celui-ci reposer les deux minutes complètes.

Fiche du composé Comparer les composés

Tableau de référence

Volumes de reconstitution pour le catalogue.

Chaque article du catalogue expédié sous forme de culot lyophilisé, avec la masse indiquée sur le flacon, le solvant retenu par convention dans cette référence, un volume de travail choisi pour que la concentration tombe sur un chiffre rond, et la masse transportée par une unité de seringue U-100. La colonne « volume » est une convention, pas une spécification : n'importe quel volume est chimiquement valide, et le modifier ne change que la colonne de concentration.

Composé	Catégorie	Par flacon	Solvant	Volume	Concentration	Par unité (10 µL)
IGF-1 LR3 1 mg / vial	Growth & Anabolic	1 mg	0.6% AcOH	1 mL	1 mg/mL	10 µg
CJC-1295 (No DAC) 5 mg / vial	Growth & Anabolic	5 mg	BAC	2 mL	2.5 mg/mL	25 µg
CJC-1295 (with DAC) 5 mg / vial	Growth & Anabolic	5 mg	BAC	2 mL	2.5 mg/mL	25 µg
CJC-1295 No DAC + Ipamorelin Blend 5 mg + 5 mg / vial	Growth & Anabolic	10 mg	BAC	2 mL	5 mg/mL	50 µg
Ipamorelin 5 mg / vial	Growth & Anabolic	5 mg	BAC	2 mL	2.5 mg/mL	25 µg
Tesamorelin 5 mg / vial	Growth & Anabolic	5 mg	BAC	2 mL	2.5 mg/mL	25 µg
MOTS-c 10 mg / vial	Growth & Anabolic	10 mg	BAC	2 mL	5 mg/mL	50 µg
BPC-157 5 mg / vial	Healing & Recovery	5 mg	BAC	2 mL	2.5 mg/mL	25 µg
TB-500 (Thymosin β-4 Fragment) 5 mg / vial	Healing & Recovery	5 mg	BAC	2 mL	2.5 mg/mL	25 µg
BPC-157 + TB-500 Blend 5 mg + 5 mg / vial	Healing & Recovery	10 mg	BAC	2 mL	5 mg/mL	50 µg
GHK-Cu (Copper Peptide) 50 mg 50 mg / vial	Healing & Recovery	50 mg	BAC	5 mL	10 mg/mL	100 µg
GHK-Cu (Copper Peptide) 100 mg 100 mg / vial	Healing & Recovery	100 mg	BAC	10 mL	10 mg/mL	100 µg
3-GLP (Retatrutide) 10 mg / vial	Métabolique & Poids	10 mg	BAC	2 mL	5 mg/mL	50 µg
AOD-9604 5 mg / vial	Métabolique & Poids	5 mg	BAC	2 mL	2.5 mg/mL	25 µg
Melanotan II (MT-2) 10 mg / vial	Skin & Cosmetic	10 mg	BAC	2 mL	5 mg/mL	50 µg
Melanotan I (MT-1, Afamelanotide) 10 mg / vial	Skin & Cosmetic	10 mg	BAC	2 mL	5 mg/mL	50 µg
GLOW 70 mg Blend 70 mg total (50 + 10 + 10)	Skin & Cosmetic	70 mg	BAC	5 mL	14 mg/mL	140 µg
KLOW 80 mg Blend 80 mg total (50 + 10 + 10 + 10)	Skin & Cosmetic	80 mg	BAC	5 mL	16 mg/mL	160 µg
SNAP-8 10 mg / vial	Skin & Cosmetic	10 mg	BAC	2 mL	5 mg/mL	50 µg
Selank 5 mg / vial	Cognitif & Sommeil	5 mg	BAC	2 mL	2.5 mg/mL	25 µg
Semax 5 mg / vial	Cognitif & Sommeil	5 mg	BAC	2 mL	2.5 mg/mL	25 µg
DSIP (Delta Sleep-Inducing Peptide) 5 mg / vial	Cognitif & Sommeil	5 mg	BAC	2 mL	2.5 mg/mL	25 µg
PT-141 (Bremelanotide) 10 mg / vial	Sexual & Hormonal	10 mg	BAC	2 mL	5 mg/mL	50 µg
HCG (Human Chorionic Gonadotropin) 5 000 IU / vial	Sexual & Hormonal	5 000 IU	BAC	5 mL	1 000 IU/mL	10 IU
Teriparatide (PTH 1-34) 10 mg / vial	Sexual & Hormonal	10 mg	BAC	2 mL	5 mg/mL	50 µg
NAD+ (Nicotinamide Adenine Dinucleotide) 500 mg / vial	Support & Solvents	500 mg	BAC	10 mL	50 mg/mL	500 µg
L-Glutathione (Reduced) 1 500 mg / vial	Support & Solvents	1 500 mg	WFI	10 mL	150 mg/mL	1.5 mg

BAC = l'eau bactériostatique · WFI = eau stérile pour préparations injectables, sans conservateur · 0.6% AcOH = acide acétique dilué. Les colonnes de concentration et de valeur par unité sont calculées à partir des deux colonnes précédentes au moment de l'affichage de la page, elles ne peuvent donc jamais se désynchroniser du catalogue. Les 7 articles restants du catalogue de 34 composés n'apparaissent pas ici car ils ne nécessitent aucun solvant : trois sont expédiés sous forme de gélules ou de poudre en vrac, deux sont fournis déjà dissous sous forme de solutions topiques de 30 mL, et deux sont les articles d'accompagnement utilisés pour effectuer la reconstitution elle-même.

Protocole à la paillasse

Comment reconstituer des peptides en huit étapes.

L'ordre compte plus que la vitesse. Les étapes deux et trois sont celles que l'on saute habituellement, et ce sont justement les deux qui déterminent si le reste du flacon sera fiable une semaine plus tard.

01
Équilibrer à température ambiante

Sortez le flacon de peptide et le solvant du réfrigérateur et laissez-les sur la paillasse pendant dix à quinze minutes. Un solvant froid imprègne plus lentement un culot lyophilisé, et un flacon froid amené directement dans une pièce chaude condense de l'humidité sur le verre, exactement là où vous allez travailler.
≈ 10–15 min · passif
02
Faire le calcul en premier

Divisez la masse indiquée sur le flacon par le volume que vous comptez ajouter. Notez le résultat sur l'étiquette avant même d'ouvrir quoi que ce soit. Une concentration reconstituée de mémoire trois jours plus tard n'est qu'une estimation, et une estimation à ce stade se propage dans toutes les mesures qui suivent.
≈ 1 min · C = m ÷ V
03
Désinfecter les deux septums

Essuyez le septum en caoutchouc du flacon de peptide et celui du flacon de solvant avec un tampon d'alcool isopropylique à 70% neuf, un tampon par septum, et laissez chacun sécher à l'air pendant environ trente secondes. L'alcool désinfecte en s'évaporant ; un septum encore humide n'a pas fini d'être désinfecté, et le résidu est entraîné vers l'intérieur par l'aiguille.
≈ 1 min · IPA à 70%, séchage à l'air
04
Prélever le volume mesuré

À l'aide d'une seringue stérile à usage unique, prélevez le volume de solvant calculé à l'étape deux. Lisez la graduation à hauteur des yeux, au niveau du bord avant du joint du piston et non du haut de la collerette, et chassez les bulles d'air avant de retirer l'aiguille du flacon de solvant.
≈ 1 min · seringue à usage unique
05
Verser le long de la paroi du flacon

Piquez le septum du flacon de peptide selon un angle faible et laissez le filet de liquide s'écouler le long de la paroi intérieure du verre. Ne le dirigez pas vers le culot. Le vide résiduel aspirera le liquide plus vite que vous ne le pensez, donc retenez le piston plutôt que de le pousser — un jet dirigé directement sur le culot est la cause la plus fréquente de moussage.
≈ 30 s · retenir le piston
06
Laisser reposer, puis faire tourner — ne jamais secouer

Retirez l'aiguille, jetez la seringue directement dans un collecteur d'objets tranchants, et laissez le flacon reposer debout pendant une à deux minutes. Faites-le ensuite rouler ou tourner doucement entre les doigts jusqu'à ce que la solution soit homogène. Secouer fouette de l'air dans le liquide et cisaille les séquences les plus longues à l'interface air-liquide.
≈ 2 min · rotation douce
07
Inspecter sur deux fonds

Tenez le flacon devant un fond blanc, puis devant un fond noir. Le blanc révèle les particules et les fibres ; le noir révèle le trouble et la turbidité. Une solution correctement reconstituée est optiquement limpide sur les deux fonds. Si ce n'est pas le cas, arrêtez-vous ici — le flacon vous dit quelque chose qu'aucune manipulation supplémentaire ne corrigera.
≈ 30 s · blanc puis noir
08
Étiqueter, dater, réfrigérer

Inscrivez la concentration et la date de reconstitution directement sur le flacon. Conservez-le debout à +4 °C, à l'abri de la lumière. S'il ne sera pas consommé dans la fenêtre de stabilité ci-dessous, répartissez-le dès maintenant en aliquots à usage unique, pendant que la solution est encore fraîche et que le flacon n'a été ouvert qu'une seule fois.
≈ 2 min · +4 °C, debout

Technique stérile

Le septum est votre seule barrière.

Chaque test du processus de libération — pureté HPLC, identité par spectrométrie de masse, charge en endotoxines — décrit le contenu d'un flacon scellé. Aucun d'entre eux ne survit au contact d'une aiguille usagée. La technique stérile n'est pas un rituel : elle garantit que le travail analytique déjà payé conserve son sens, ce qui cesse d'être vrai dès l'instant où la barrière est franchie sans précaution.

Un tampon, un septum, une direction

Un tampon d'alcool isopropylique à 70% est à usage unique. Essuyer deux septums avec le même tampon transfère sur le second tout ce qui se trouvait sur le premier. Essuyez une seule fois, dans une seule direction, puis jetez le tampon. Le kit d'injection IGF1 Shop fournit 100 tampons emballés individuellement pour 50 seringues précisément parce que le bon ratio est de deux tampons par session.

Ne jamais repiquer avec une aiguille usagée

Une aiguille ayant déjà traversé un septum n'est plus stérile, et elle est également plus émoussée — le carottage pousse des fragments de caoutchouc dans le flacon. Les seringues du kit sont en calibre 29G, avec aiguille sertie de façon permanente, à usage unique et stérilisées à l'oxyde d'éthylène. Il n'existe aucune procédure où la réutiliser soit la bonne décision.

Les objets tranchants vont dans un collecteur d'objets tranchants

Les seringues usagées doivent être placées dans un contenant rigide résistant à la perforation, éliminé selon les règles locales relatives aux objets tranchants médicaux. C'est la seule étape du protocole qui protège quelqu'un d'autre que vous, et elle n'est fournie dans aucun kit — vous devez vous en être procuré un avant de commencer.

Dépannage

Ce que le flacon vous dit.

La plupart des problèmes de reconstitution se manifestent visuellement en moins de deux minutes. Le tableau ci-dessous met en correspondance ce que vous observez avec la cause la plus probable et avec l'utilisabilité ou non du matériel. Quand une ligne indique d'arrêter, cela veut dire arrêter : aucun réchauffement, aucune rotation ni aucune attente ne permet de récupérer un peptide agrégé.

Ce que vous observezCause la plus probableQuandAction

Mousse dense en surface Solvant projeté directement sur le culot, ou flacon secoué Immédiat Laisser se stabiliser, puis faire tourner

Culot encore visible après cinq minutes Solvant froid, ou séquence nécessitant un diluant acide Immédiat Réchauffer à température ambiante, faire tourner à nouveau

Trouble persistant sur fond noir Agrégation — cisaillement, agitation ou force ionique inadaptée Immédiat Arrêter, ne pas utiliser

Fibres ou particules en suspension sur fond blanc Contamination particulaire ou carottage du caoutchouc Immédiat Arrêter, photographier, signaler

Culot affaissé ou rétracté à la réception Défaut du cycle de lyophilisation ou perte d'étanchéité du vide Avant l'ajout du solvant Ne pas reconstituer, signaler

Aucune résistance à l'entrée de l'aiguille Vide perdu pendant le transport Avant l'ajout du solvant Inspecter d'abord le culot

Formation d'un précipité après réfrigération Limite de solubilité dépassée à +4 °C Heures à jours Reconstituer plus dilué la prochaine fois

Solution bleu foncé Chélate de cuivre(II) du GHK-Cu — attendu Immédiat Normal, poursuivre

Interdits absolus

Quatre choses qui condamnent le flacon.

Il ne s'agit pas de préférences. Chacune de ces situations détruit soit le matériau, soit votre capacité à affirmer ce qu'il contient, et aucune des deux n'est rattrapable par une manipulation soignée par la suite.

Secouer un flacon reconstitué

L'agitation mécanique dénature les peptides à l'interface air-liquide et produit des agrégats qui ne se redissoudront pas. Le dommage est invisible jusqu'à ce qu'il devienne trouble, et à ce stade la séquence a déjà été altérée. Faites tourner, laissez reposer, patientez — le culot se dissout à son propre rythme.

Cycles répétés de congélation-décongélation

La congélation en elle-même est bien tolérée. Le cycle, lui, ne l'est pas : chaque décongélation concentre les solutés à la frontière de glace en recul et soumet le peptide à un environnement local qui n'a rien à voir avec la solution globale. Répartissez avant de congeler, décongelez une seule fois, et jetez ce qu'il reste.

Repiquer avec une aiguille usagée

Un seul passage à travers un septum met fin à la stérilité de l'aiguille et l'émousse suffisamment pour carotter le caoutchouc. Un flacon repiqué avec une aiguille usagée porte une charge microbienne et particulaire inconnue, ce qui rend inapplicable au contenu actuel chaque chiffre analytique figurant sur son Certificat d'Analyse.

Un flacon non étiqueté

Un flacon réfrigéré sur lequel ne figurent ni concentration ni date est un matériau inutilisable, quel que soit ce qui y est dissous. Il n'existe aucun moyen de reconstituer l'un ou l'autre de ces chiffres à partir du flacon lui-même, et les estimer transforme une expérience mesurée en anecdote.

Remarques spécifiques par composé

Là où la règle générale souffre une exception.

La majorité du catalogue se comporte de la même manière : eau bactériostatique, rotation douce, solution limpide. Six cas font exception, et cinq de ces six sont prévisibles à partir de la chimie indiquée sur la page produit.

IGF-1 LR3 et diluants acides

Un analogue de 83 résidus pose un problème de solubilité différent de celui d'un peptide de cinq résidus. L'IGF-1 LR3 se dissout difficilement à pH neutre ; l'acide acétique à 0.6% est le premier solvant conventionnel, avec dilution ensuite si le protocole l'exige. Le forcer dans de l'eau pure avec agitation est le moyen le plus rapide de l'agréger.

GHK-Cu et la solution bleue

Le chélate de cuivre(II) absorbe dans le rouge, si bien qu'une solution de GHK-Cu correctement reconstituée est bleu foncé. C'est le seul cas du catalogue où la couleur n'est pas un signal d'alerte. Les flacons de 50 mg et de 100 mg sont le même composé à des masses de remplissage différentes, et tous deux utilisent la même concentration de travail de 10 mg/mL.

Mélanges co-lyophilisés

Quatre entrées du catalogue sont des mélanges lyophilisés ensemble dans un même flacon. Un seul volume de solvant reconstitue tous les composants simultanément, et la colonne de concentration du tableau ci-dessus se rapporte à la masse combinée. Les masses individuelles de chaque composant sont indiquées sur la page produit de chaque mélange.

Composés d'accompagnement à forte masse

Le NAD+ à 500 mg et le L-glutathion à 1 500 mg par flacon contiennent bien plus de solide que n'importe quel peptide du catalogue. Tous deux utilisent 10 mL afin que la solution reste bien en dessous de la saturation, et le glutathion s'oxyde au contact de l'air — reconstituez-le immédiatement avant utilisation plutôt que de conserver la solution.

Le HCG se mesure en IU

Une hormone glycoprotéique est normalisée par son activité biologique, et non par sa masse, si bien que le flacon indique 5 000 IU plutôt qu'un nombre de milligrammes. Le calcul reste inchangé — 5 000 IU dans 5 mL donnent 1 000 IU/mL — mais tous les chiffres en aval portent l'IU comme unité, et mélanger les deux conventions dans un même cahier de laboratoire est une erreur courante et coûteuse.

Les topiques arrivent déjà en solution

Les deux composés topiques de 30 mL du catalogue sont fournis déjà dissous dans un véhicule d'éthanol et de propylène glycol, à une concentration indiquée. Ils ne nécessitent aucune reconstitution et ne doivent pas être dilués à l'eau, ce qui ferait précipiter le soluté hors du véhicule. C'est pour cette raison qu'ils sont absents du tableau des volumes.

Une fois le culot dissous

Stabilité après reconstitution.

Un peptide reconstitué est un actif qui se dégrade, et la vitesse de cette dégradation dépend de trois éléments que vous maîtrisez : la température, la présence d'un conservateur, et le nombre de fois où le flacon est ouvert. Les fenêtres ci-dessous sont celles qu'IGF1 Shop publie dans sa documentation qualité.

—Température ambiante

ConservateurNon pertinent

StatutCe n'est pas un état de conservation

La température ambiante est une condition de travail pour les dix minutes où le flacon se trouve sur la paillasse, pas un endroit où laisser une solution toute la nuit.

14 dWFI, +4 °C

ConservateurAucun

OuverturesMinimiser

Extrémité basse de la plage publiée de 14–28 jours. Un solvant sans conservateur n'offre aucune protection contre ce que l'aiguille introduit.

28 dEau BAC, +4 °C

Conservateur0.9% d'alcool benzylique

OuverturesRépétées, autorisées

L'extrémité haute de la fenêtre publiée, et la raison pour laquelle l'eau bactériostatique est le solvant par défaut pour tout flacon à usage multiple.

−20 °CRéparti en aliquots

FormatVolumes à usage unique

Cycles de décongélationExactement un

L'option long terme, et la seule qui survive au-delà de la fenêtre réfrigérée. −80 °C si possible ; ne jamais recongeler un aliquot décongelé.

Avant reconstitution — flacon lyophilisé scellé

Ambiante, à l'abri de la lumière	Plusieurs semaines
+4 °C	12 mois
−20 °C	24 mois
Forme d'expédition	Ambiante, emballage isotherme
Lumière	Conserver dans le carton
Indiqué sur	Certificat d'Analyse par lot

Après reconstitution — solution

Eau bactériostatique, +4 °C	Jusqu'à 28 jours
Sans conservateur, +4 °C	Plus court — 14 jours au maximum
Aliquots congelés	−20 °C ou −80 °C
Cycles de congélation-décongélation	1
Orientation	Debout, à l'abri de la lumière
L'étiquette doit indiquer	Concentration + date

Le profil de conservation du lot spécifique que vous avez reçu est indiqué sur son Certificat d'analyse, aux côtés du numéro de lot, de la date de libération et des trois tests de libération. En cas de divergence entre le COA et une référence générale, le COA prévaut : il décrit votre flacon, cette page décrit la classe. Le raisonnement derrière le choix d'expédier à température ambiante est exposé dans la politique d'expédition.

Ce que les tests couvrent, et ce qu'ils ne couvrent pas

Là où le COA s'arrête et où vous commencez.

Trois tests indépendants garantissent chaque lot libéré, et tous trois décrivent le contenu d'un flacon scellé au moment de la libération. Comprendre ce que chacun peut, ou ne peut pas, prédire de ce que vous observez à la paillasse fait toute la différence entre lire un COA et le citer.

L'HPLC vous indique quelle fraction est le composé

L'HPLC en phase inverse à 220 nm, comparée à un étalon de référence, donne une pureté en pourcentage de surface, avec un seuil de libération de 99.0%. Elle indique quelle proportion du solide correspond à la séquence recherchée. Elle ne dit rien sur la façon dont ce solide se comportera dans le solvant que vous choisirez — un lot à 99.6% et un lot à 99.1% se dissolvent de façon identique. Voir la méthode HPLC pour l'ensemble complet des paramètres.

La spectrométrie de masse confirme qu'il s'agit de la bonne molécule

L'ESI-MS confirme la masse moléculaire à ±1 Da près de la valeur théorique, détectant les troncatures et l'oxydation qui co-éluent de façon invisible sous un pic HPLC. C'est un contrôle d'identité, pas une prédiction de comportement. La méthode est documentée sur la page de spectrométrie de masse.

L'endotoxine est celle que votre technique peut annuler

Le test LAL chromogénique cinétique plafonne les lots libérés en dessous de 0.5 EU/mg. Ce chiffre décrit un flacon scellé. L'endotoxine introduite par la suite — par une aiguille réutilisée, un septum humide, un solvant non stérile — est invisible, cumulative, et entièrement de votre fait. Le test est expliqué sur la page consacrée au test d'endotoxine.

Les trois tests sont réalisés par un laboratoire sous contrat, structurellement indépendant du site de synthèse et accrédité selon la ISO/IEC 17025:2017. L'ensemble du processus de libération est décrit sur la page consacrée au processus qualité, et la terminologie employée tout au long de cette page — lyophilisation, culot lyophilisé, eau bactériostatique, unité d'endotoxine — est définie dans le glossaire.

Équipement

Ce qui est fourni avec la commande, et ce que vous devez fournir vous-même.

Chaque commande est expédiée avec le composé et son Certificat d'Analyse par lot. Rien d'autre n'est présumé fourni. Le solvant et les seringues sont des articles de catalogue séparés, car un laboratoire qui en dispose déjà ne devrait pas les payer deux fois — et parce que le bon solvant n'est pas le même pour chaque flacon. Le collecteur d'objets tranchants est le seul article que personne ne fournit : procurez-vous-en un avant d'ouvrir le premier septum.

Liste de vérification

Sur la paillasse avant de commencer.

Cinq éléments. Deux proviennent du catalogue, deux sont des consommables que vous devriez déjà posséder, et un est une décision plutôt qu'un objet.

Fourni par IGF1 Shop

Le composé	Flacon lyophilisé scellé
Certificat d'analyse	Par lot, inclus dans l'envoi
Eau bactériostatique	Flacon de 20 mL, commandé séparément
Kit d'injection	50 seringues + 100 tampons
Format de seringue	U-100, 0.5 mL, 29G, usage unique
Tampons	Isopropylique à 70%, emballés individuellement

Fourni par vous

Collecteur d'objets tranchants	Rigide, résistant à la perforation
Réfrigérateur	+4 °C, stable
Congélateur	−20 °C pour les aliquots
Étiquette et marqueur	Encre résistante aux solvants
La décision de concentration	Prise avant l'ouverture
Conformité légale	Votre juridiction, votre responsabilité

Ces deux articles du catalogue relèvent de la catégorie Accessoires & solvants : l'eau bactériostatique à USD 14 le flacon de 20 mL, et le kit d'injection à USD 25 pour 50 seringues U-100 stériles et 100 tampons d'alcool. Un flacon de solvant de 20 mL permet de reconstituer dix flacons de 2 mL, si bien que le ratio le plus logique est généralement d'un flacon de solvant pour une poignée de composés.

Portée de cette page. Ceci est une référence de manipulation en laboratoire : choix du solvant, calcul de la concentration, technique stérile et conservation. Elle ne contient aucune indication de dosage ni aucun protocole d'administration, et n'en constitue pas un. IGF1 Shop fournit des composés de qualité recherche destinés exclusivement à un usage de laboratoire in vitro, non destinés à un usage humain ou vétérinaire ; plusieurs composés du catalogue sont des médicaments expérimentaux qui ne sont pas approuvés pour un usage humain en dehors de protocoles d'essai. La légalité de l'importation, de la possession et de l'usage varie selon les juridictions et relève de la responsabilité de l'acheteur — les conditions complètes sont énoncées dans l' avertissement recherche et les conditions d'utilisation.

FAQ

Questions sur la reconstitution des peptides.

Quelle quantité d'eau bactériostatique dois-je ajouter à un flacon de 5 mg de BPC-157 ?

Cette référence retient par convention 2 mL d'eau bactériostatique pour un flacon de 5 mg, ce qui donne 2.5 mg/mL. Sur une seringue à insuline U-100, une unité correspond à 0.01 mL, donc une unité transporte 25 µg de peptide et le corps de seringue complet de 0.5 mL en transporte 1.25 mg. N'importe quel volume fonctionne chimiquement — 1 mL donne 5 mg/mL, 5 mL donne 1 mg/mL — car le volume modifie la concentration, jamais la masse totale de peptide présente dans le flacon. Choisissez le volume qui rend votre calcul le plus rond possible.

Quelle est la différence entre l'eau bactériostatique et l'eau stérile pour préparations injectables ?

L'eau stérile pour préparations injectables (WFI) est sans conservateur : une fois le septum percé, le flacon ne dispose plus d'aucune protection contre l'intrusion microbienne, c'est donc un solvant à usage unique. L'eau bactériostatique est cette même eau additionnée de 0.9% d'alcool benzylique comme conservateur bactériostatique, ce qui permet d'accéder au même flacon à plusieurs reprises pendant jusqu'à 28 jours à +4 °C. Utilisez le WFI lorsque le conservateur risquerait d'interférer avec l'analyse ou avec une séquence sensible ; utilisez l'eau bactériostatique pour tout flacon que vous comptez ouvrir plus d'une fois.

Combien de temps un peptide reconstitué se conserve-t-il au réfrigérateur ?

IGF1 Shop indique 14 à 28 jours à +4 °C pour une solution reconstituée, selon la séquence, le chiffre de 28 jours étant lié au conservateur bactériostatique présent dans le solvant. Une eau sans conservateur réduit considérablement cette fenêtre. Pour toute conservation plus longue, répartissez la solution en volumes à usage unique et congelez-les à −20 °C ou −80 °C plutôt que de rouvrir sans cesse un même flacon réfrigéré.

Comment convertir des mg/mL en unités de seringue à insuline ?

Une seringue U-100 est graduée de sorte que 100 unités correspondent à 1 mL ; une unité vaut donc 0.01 mL, soit 10 µL. Multipliez la concentration en mg/mL par 0.01 pour obtenir la masse transportée par une unité. Une solution à 2.5 mg/mL transporte 25 µg par unité ; une solution à 5 mg/mL transporte 50 µg par unité. Notez que le corps de seringue de 0.5 mL fourni dans le kit d'injection IGF1 Shop contient 50 de ces unités, et non 100 — la graduation à 100 unités correspond au corps de seringue de 1 mL.

Puis-je secouer le flacon pour dissoudre la poudre plus vite ?

Non. Secouer introduit de l'air dans la solution, génère de la mousse à l'interface air-liquide et cisaille mécaniquement les séquences les plus longues. Versez le solvant lentement le long de la paroi intérieure du flacon plutôt que directement sur le culot, laissez ensuite reposer le flacon une à deux minutes, puis faites-le tourner doucement. La plupart des peptides de ce catalogue se dissolvent sans aucune agitation dès que le solvant a imprégné le culot.

Ma solution reconstituée est trouble ou contient des particules visibles — que faire ?

Arrêtez-vous et ne l'utilisez pas. Une solution de peptide correctement reconstituée est optiquement limpide. Un trouble persistant, des fibres en suspension ou un sédiment qui ne se redissout pas à température ambiante indiquent une agrégation, une dissolution incomplète ou une contamination. Photographiez le flacon, notez le numéro de lot gravé sur le capuchon et imprimé sur le Certificat d'Analyse, puis contactez le support. Une exception : le GHK-Cu produit une solution bleu foncé en raison du chélate de cuivre(II) — cette couleur est propre au composé, ce n'est pas un défaut.

Puis-je congeler un peptide reconstitué ?

Oui, à condition de répartir la solution au préalable. Les dommages liés à la conservation congelée ne viennent pas du froid, mais du cycle de congélation-décongélation : chaque décongélation concentre les solutés à la frontière de la glace et stresse le peptide. Répartissez la solution reconstituée en volumes à usage unique immédiatement après la reconstitution, congelez-les à −20 °C ou −80 °C, et décongelez chaque volume une seule fois. Ne recongelez jamais un aliquot déjà décongelé.

Le volume de reconstitution change-t-il la quantité de peptide que j'ai ?

Non. Le flacon contient la masse indiquée sur l'étiquette et sur le Certificat d'Analyse, quel que soit le volume que vous y ajoutez. Ajouter 1 mL plutôt que 2 mL à un flacon de 5 mg donne 5 mg/mL au lieu de 2.5 mg/mL — deux fois la concentration, pour la même masse de 5 mg de peptide. Le volume est une décision de conversion d'unité, pas une décision de dosage.

Toujours pas résolu ? Les commandes vérifiées peuvent contacter le support client en indiquant le numéro de lot inscrit sur le capuchon du flacon. Pour une comparaison plus large de ce que contient le catalogue et pourquoi, consultez le guide de l'acheteur 2026.